续上补充:
材料与方法
农杆菌属菌株。用根癌农杆菌菌株EHA101带有一个二元向量pLAN411或pLAN421(图1)。质粒pLAN411含有nptII基因连接CaMV 35S启动子和nopaline胭脂碱合成酶(NOS)终结子。而质粒pLAN421含有nptII基因连接NOS启动子和NOS终结子,在两种质粒中,GUS基因连接35S启动子和NOS终结子。
植物材料制备。种子是从在市场上购买的品种“Hayward”的水果中收集的,在自来水下被洗得很好以去除果皮。然后将其浸泡在2%氯化钠溶液中,用力摇晃25分钟,用消毒水冲洗10次。灭菌的种子被镀在MS(Murashige和Skoog 1962)培养基上,没有植物生长调节剂,用0.8%琼脂凝固。大约一个月后,被延长到3到4厘米的下胚轴被切割成5毫米的线段,感染根癌农杆菌。
茎扦条的制备如下。1989年6月,新伸长的枝条从田间种植的树收集,品种海沃德'Hayward',种植在名取农场(山梨县)。茎被切至约5厘米长,其表面被中性洗涤剂洗净。插条浸泡在中性洗涤剂溶液中5分钟,用水冲洗5分钟,用70%乙醇浸泡5分钟。他们用1%的低氯酸钠溶液进行了两次10分钟消毒,用消毒过的水冲洗了三到四次。经灭菌后的插条被切成3毫米厚的部分,并被感染根癌农杆菌。
根癌农杆菌感染和嫩芽再生。根癌农杆菌菌株EHA101 / pLAN411和EHA101 / pLAN421生长在5 ml的LB(Sambrook等人1989)培养基中,其中含有50 μg/ ml卡那霉素、25 μg/ ml氯霉素和50 μg/ ml的壮观霉素,在30℃过夜,然后用20 ml无菌蒸馏水稀释。将下胚轴或茎段放入农杆菌悬浮液中,用力摇动20分钟,通过筛网过滤,将其与农杆菌悬浮液分离。
节段被涂在消毒纸巾上,并在不含抗生素的情况下被镀上培养基。对两种培养基进行了检测,其中一种培养基为MS4PU,其中含有1.0 mg/l N-(2 -氯- 4-吡啶基)-N- 苯基脲(4PU),而另一种培养基B5Z则由B5(Gamborg等人1968)培养基组成,含有3 .0mg/l 玉米素。本研究中用于组织培养的所有介质均以0.2%的凝胶固化。
在与根癌农杆菌共同培养一天后,片段被转移到MS4PU或B5Z培养基上,每一个培养基都添加了500 μg / ml的头孢氨噻肟(头孢噻肟钠,赫司特公司),以去除细菌。
共培养一周后,片段切割面开始形成愈伤组织。在含头孢噻肟钠培养基的两周培养后,所有的片段被转移到选择培养基,MS4PU或B5Z,辅以25 μg /ml 卡那霉素和500 μg / ml的头孢噻肟钠。在选择培养基上培养两周后,下胚轴段再生嫩芽,培养4周后产生茎段。
再生芽长度达到约5mm时,它们被从愈伤组织或片段切断,转移到新制备的选择培养基。4个或5周后,嫩芽生长到1cm左右,然后转移到另一个由MS培养基组成的培养基中,其中含有25 μg / ml卡那霉素和100 μg/ ml的头孢噻肟钠,没有植物生长调节剂。在新制备的培养基上,每隔4周或5周就会有再生嫩芽,这是一种半强度的MS培养基,有25 μg / ml卡那霉素和100 μg / ml的头孢噻肟钠。在再生芽生根时,将植株移植到无菌蛭石上进行驯化。所有的培养都保持在25℃,16小时在荧光灯下。
NPTII活性分析和GUS分析。根据McDonnel等人.(1987)对NPTII活性进行了斑点杂交分析。根据杰弗逊(1987年)的研究,使用4 -甲基伞状细胞(4 -MUG)的荧光测定法检测了GUS的活性。用5 -溴- 4 -氯- 3- indolylglucuronide(葡萄糖苷酸)组织化学检测(Jefferson 1987)对转化植物中GUS表达定位进行了评价。叶片、叶柄或茎部分切割用剃须刀片进行切割,并与反应物的缓冲液一起孵育(0.1 M磷酸钠缓冲液,pH7.0)含10 mM葡萄糖苷酸在37℃过夜。GUS表达被检测为蓝色沉淀,当叶绿素掩盖观察时,切片被浸泡在70%乙醇的30分钟后,GUS反应脱色的叶绿素,然后在显微镜下观察。
材料与方法
农杆菌属菌株。用根癌农杆菌菌株EHA101带有一个二元向量pLAN411或pLAN421(图1)。质粒pLAN411含有nptII基因连接CaMV 35S启动子和nopaline胭脂碱合成酶(NOS)终结子。而质粒pLAN421含有nptII基因连接NOS启动子和NOS终结子,在两种质粒中,GUS基因连接35S启动子和NOS终结子。
植物材料制备。种子是从在市场上购买的品种“Hayward”的水果中收集的,在自来水下被洗得很好以去除果皮。然后将其浸泡在2%氯化钠溶液中,用力摇晃25分钟,用消毒水冲洗10次。灭菌的种子被镀在MS(Murashige和Skoog 1962)培养基上,没有植物生长调节剂,用0.8%琼脂凝固。大约一个月后,被延长到3到4厘米的下胚轴被切割成5毫米的线段,感染根癌农杆菌。
茎扦条的制备如下。1989年6月,新伸长的枝条从田间种植的树收集,品种海沃德'Hayward',种植在名取农场(山梨县)。茎被切至约5厘米长,其表面被中性洗涤剂洗净。插条浸泡在中性洗涤剂溶液中5分钟,用水冲洗5分钟,用70%乙醇浸泡5分钟。他们用1%的低氯酸钠溶液进行了两次10分钟消毒,用消毒过的水冲洗了三到四次。经灭菌后的插条被切成3毫米厚的部分,并被感染根癌农杆菌。
根癌农杆菌感染和嫩芽再生。根癌农杆菌菌株EHA101 / pLAN411和EHA101 / pLAN421生长在5 ml的LB(Sambrook等人1989)培养基中,其中含有50 μg/ ml卡那霉素、25 μg/ ml氯霉素和50 μg/ ml的壮观霉素,在30℃过夜,然后用20 ml无菌蒸馏水稀释。将下胚轴或茎段放入农杆菌悬浮液中,用力摇动20分钟,通过筛网过滤,将其与农杆菌悬浮液分离。
节段被涂在消毒纸巾上,并在不含抗生素的情况下被镀上培养基。对两种培养基进行了检测,其中一种培养基为MS4PU,其中含有1.0 mg/l N-(2 -氯- 4-吡啶基)-N- 苯基脲(4PU),而另一种培养基B5Z则由B5(Gamborg等人1968)培养基组成,含有3 .0mg/l 玉米素。本研究中用于组织培养的所有介质均以0.2%的凝胶固化。
在与根癌农杆菌共同培养一天后,片段被转移到MS4PU或B5Z培养基上,每一个培养基都添加了500 μg / ml的头孢氨噻肟(头孢噻肟钠,赫司特公司),以去除细菌。
共培养一周后,片段切割面开始形成愈伤组织。在含头孢噻肟钠培养基的两周培养后,所有的片段被转移到选择培养基,MS4PU或B5Z,辅以25 μg /ml 卡那霉素和500 μg / ml的头孢噻肟钠。在选择培养基上培养两周后,下胚轴段再生嫩芽,培养4周后产生茎段。
再生芽长度达到约5mm时,它们被从愈伤组织或片段切断,转移到新制备的选择培养基。4个或5周后,嫩芽生长到1cm左右,然后转移到另一个由MS培养基组成的培养基中,其中含有25 μg / ml卡那霉素和100 μg/ ml的头孢噻肟钠,没有植物生长调节剂。在新制备的培养基上,每隔4周或5周就会有再生嫩芽,这是一种半强度的MS培养基,有25 μg / ml卡那霉素和100 μg / ml的头孢噻肟钠。在再生芽生根时,将植株移植到无菌蛭石上进行驯化。所有的培养都保持在25℃,16小时在荧光灯下。
NPTII活性分析和GUS分析。根据McDonnel等人.(1987)对NPTII活性进行了斑点杂交分析。根据杰弗逊(1987年)的研究,使用4 -甲基伞状细胞(4 -MUG)的荧光测定法检测了GUS的活性。用5 -溴- 4 -氯- 3- indolylglucuronide(葡萄糖苷酸)组织化学检测(Jefferson 1987)对转化植物中GUS表达定位进行了评价。叶片、叶柄或茎部分切割用剃须刀片进行切割,并与反应物的缓冲液一起孵育(0.1 M磷酸钠缓冲液,pH7.0)含10 mM葡萄糖苷酸在37℃过夜。GUS表达被检测为蓝色沉淀,当叶绿素掩盖观察时,切片被浸泡在70%乙醇的30分钟后,GUS反应脱色的叶绿素,然后在显微镜下观察。